干货分享 | 蛋白质印迹的常见问题及解决方案 - MedChemExpress

图 1. 蛋白质印迹相互关联的步骤^[1]。 

 (1) 将样品 (通常是蛋白质混合物) 加载到凝胶上。Marker 标记包含各种已知分子量的预标记蛋白质，与蛋白质样品一起加载到凝胶上作为尺寸参考。(2) 凝胶电泳用于根据蛋白质的分子量来分离蛋白质。(3) 将蛋白质转移或“印迹”到膜上。(4) 封闭膜以减少非特异性结合，然后依次用特异性结合目标蛋白的一抗和二抗进行探测。后者结合一抗并携带允许随后检测的酶或荧光团。(5) 分别通过化学发光反应或荧光检测信号。(6) 准备蛋白质印迹图像以供发表。

由于该实验时间长、细节多，从样品制备到显影，每个步骤中都可能存在问题，最后得到的条带往往千奇百怪、不尽人意……在这篇推文中，我们将为您介绍一些常见的 WB 实验问题以及相应的解决方案[2]。小 M 助您避免实验中的各种困扰，快来看看吧！

 

 

▐ 1. 微笑条带：

可能性原因：迁移过快、电泳缓冲液温度偏高、蛋白质超载或孔内运行缓冲液不足。

建议：应降低迁移速度、预冷缓冲液、减少蛋白上样量、缓冲液完全覆盖孔，确保内室缓冲液不会泄露到外室[4][6]。

▐ 2. 皱眉条带：

可能性原因：装置不合适，可能是凝胶和玻璃挡板底部有气泡，或者两边聚合不完全。

建议：可通过调整装置来避免该问题。

▐ 3. 条带拖尾：

可能性原因：样品溶解不好；存在一定程度地蛋白降解；电泳液反复多次使用。

建议：样品充分溶解混匀后上样；尽量使用新鲜样本；使用新鲜配制的电泳缓冲液。

▐ 4. 哑铃状不均匀条带：

可能性原因：配置胶有问题，胶凝固后不均一；样品可能含有过多杂质。

建议：重新配置胶，确保胶质量无问题来避免该现象出现；在样品使用前离心。

▐ 5. 条带粘连：

可能性原因：可能是上样量太多，或者是制胶问题，分离胶和浓缩胶之间有间隙，样品窜孔。

建议：可通过减少上样量和提高配胶质量来避免。

▐ 6. 条带空泡：

可能性原因：转膜时膜上有气泡

建议：确保在组装“三明治”时，移除凝胶和印迹膜间的所有气泡。

▐ 7. 背景有不均匀的黑色斑点：

可能性原因：封闭液未完全溶解，使不容颗粒附着在膜上从而导致发光时候膜上形成黑点；或抗体在膜上分布不均；

建议：封闭液一定要充分溶解，封闭结束之后要用 TBST 清洗三遍再加一抗；抗体孵育时保持摇动。

▐ 8. 条带空斑：

可能性原因：目的蛋白条带中间空白，周围背景正常。该现象可能是一抗二抗浓度过高，促使底物过快消耗，从而导致在进行化学发光时，底物耗尽形成空斑。

建议：可减少蛋白上样量；降低一抗和二抗浓度；或者稀释显影液。
 

通过本篇推文介绍，相信普通的难题已经难不倒你们了! 如果以上内容没有解决您的问题，欢迎大家在下方留言，小 M 欢迎大家积极交流实验中遇到的各种疑难问题~

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Beta Actin Antibody HRP Conjugated 常用的内参抗体之一，可检测 Beta Actin 总蛋白的内源水平。

alpha Tubulin Rabbit mAb 可检测 alpha-tubulin 总蛋白的内源水平，并不会与重组 β-tubulin 蛋白发生交叉反应。

c-Myc Rabbit mAb 该抗体可检测 c-Myc 总蛋白的内源水平。

HRP-conjugated AffiniPure Goat Anti-Mouse IgG H&L 鼠二抗，山羊来源的抗小鼠 IgG 抗体，用于小鼠背景下 WB、ELISA、IHC 实验。

HRP-conjugated AffiniPure Goat Anti-Rabbit IgG H&L 兔二抗，山羊来源的抗兔 IgG 抗体，用于兔子背景下 WB、IHC-P、ELISA 实验。

Ultra High Sensitivity ECL Kit  飞克级别抗原检测，一抗稀释比可达释1:1000 至1:50000 倍。  Protease Inhibitor Cocktail, mini-Tablet  (EDTA-Free) 在样品制备、保存中可增加蛋白稳定性。

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参考文献：
[1] Kroon C, et.al. Blind spots on western blots: Assessment of common problems in western blot figures and methods reporting with recommendations to improve them. PLoS Biol. 2022 Sep 12;20(9):e3001783. 
[2] Cui Y. Optimization of blocking conditions for fluorescent Western blot. Anal Biochem. 2020 Mar 15;593:113598. 
[3] Begum H, et al. Western blotting: a powerful staple in scientific and biomedical research. Biotechniques. 2022 Jun;73(1):58-69. 
[4] Mary Johnson. Materials and Methods ，Western Blot - Protocol, Troubleshooting, and Survey Results on Instruments and Reagents. 
[5] Gilda JE, et al. Western Blotting Inaccuracies with Unverified Antibodies: Need for a Western Blotting Minimal Reporting Standard (WBMRS). PLoS One. 2015 Aug 19;10(8):e0135392. 
[6] Sule R, et al. Western blotting (immunoblotting): history, theory, uses, protocol and problems. Biotechniques. 2023 Sep;75(3):99-114.